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4.resultados esperados


Los resultados esperados deberán de:

  • demostrar la viabilidad para la producción de grasas animales aptas como materia prima del biodiesel

  • demostrar un sistema eficiente de limpieza de biogás como paso previo al proceso de producción de metanol

  • proporcionar la base y el know how para el proceso de producción de metanol adaptado a las características del biogás

  • Definir y diseñar un nuevo proceso innovador y sostenible que permita la obtención de biometanol en condiciones de rendimiento y calidad similares a los utilizados actualmente para la obtención de metanol a partir de metano.

  • demostrar, a escala de laboratorio, la viabilidad técnica del proceso

  • demostrar con el Análisis del Ciclo de Vida las ventajas energéticas y medioambientales

Los canales de explotación se basarán en los de las empresas participantes. El objetivo es no sólo moverse a nivel nacional sino también europeo. También hay gran interés en el mercado suramericano, donde existe grandes producciones de metanol y todavía no existen procesos de tratamientos de residuos cárnicos sostenibles.

A nivel del mercado nacional, se potenciará este tipo de tratamiento de residuos cárnicos.

5.DESCRIPCIÓN DE LAS COLABORACIONES CON OPIs Y CITS


El Centro Tecnológico LEIA, Fundación sin ánimo de lucro, promueve la mejora ambiental y transformación tecnológica de las empresas, colaborando con ellas de forma individual o conjunta, para lograr que sean más innovadoras y, por lo tanto, más competitivas en una relación armónica con la sociedad, dentro de un desarrollo sostenible.

Fundación LEIA Centro de Desarrollo Tecnológico se encuentra en Parque Tecnológico de Álava, ubicado a 5 KM. al norte de Vitoria .Álava es una de las tres provincias que conforman la Comunidad Autónoma del País Vasco, la fundación cuenta con 116 personas (82 en plantilla, 31 becarios y 3 en practicas) y 7000m2 al margen de las colaboraciones y participaciones en diferentes empresas.

LEIA nació con vocación medioambiental y aunque con el tiempo ha diversificado sus actividades y campos de investigación (farmacia, salud, alimentaria…), l sostenibilidad y el medio ambiente sigue siendo una de las capacidades del Centro. Bajo esta perspectiva, destacar que en nuestro Plan Estratégico han quedado definidas com áreas de especialización actual: Medio Ambiente y Química verde.

Además de la plena alineación con la estrategia de LEIA, es necesario destacar que nuestro Centro cuenta con una dilatada experiencia en las tecnologías implicadas en el proyecto, como son la digestión anaerobia, tecnologías de membrana y los procesos catalíticos, áreas en las que ha realizado distintos proyectos, entr ellos:

  • “A new process using membrane reactor technology to improve the healthcare aspects of hydrogenated edible oils”, CAMERTOIL. Subvencionado por la UE (Programa Quality of Life, V Programa Marco).

  • “Enriquecimiento del Biogás para Mejora de sus Caracteríscas como Combustible”. ENRIBIO. Subvencionado por el Gobierno Vasco.

  • “Desarrollo y aplicaciones de membranas conductoras”, CONDUMEN.

  • Obtención de biodiesel a partir de aceites vegetales mediante el desarrollo de nuevos catalizadores

  • “Development of ceramic membranes for olefin recovery from liquified petroleum gases”, CERAMEN. Subvencionado por la UE (Programa Growth, V programa Marco)

Para el desarrollo del presente proyecto se configurará un equipo de 7 investigadores que abarcan las distintas áreas de conocimiento involucradas en el mismo:

  • Begoña Busturia: Lda. CC. Químicas y Diplomada en Ingeniería Ambiental., que actuará como Jefe de Proyecto por parte de LEIA

  • Mari Carmen Villarán Velasco Doctora en químicas que aportará al proyecto sus conocimentos sobre procesos caatalíticos

  • Rosa Marquínez: Lda. CC. Químicas,.

  • Olga Gómez: Lda Ingeniería Química. Especialidad Ingeniería química.

  • Jesús Torrecilla: Ldo. CC. Químicas. Especialidad que aportará al proyecto su experiencia en análisis químicos

  • Marta Cebrian, Licenciada en ciencias biológicas que aportará al proyecto sus conocimientos sobre digestión anaerobia.

  • Naiara Rojo Ingeniera química. Becaria

El interés de la Fundación LEIA en la investigación de este tipo de tecnología se basa en tres puntos:

Primero, se busca la consolidación de la Fundación LEIA como centro especializado en el campo del reciclaje, tratamiento y valorización de residuos, tanto urbanos como industriales, más concretamente en el área del tratamiento de residuos orgánicos (fracción orgánica de RSUs, lodos,…), en la que se han llevado a cabo diversos proyectos y trabajos para empresas, así como publicaciones, asistencias a congresos y contactos con otros centros e instituciones.

Segundo, se pretende continuar con la adquisición y transferencia de conocimientos sobre la tecnología de digestión anaerobia, así como con la profundización en el conocimiento de las diferentes tecnologías que permitan la utilización posterior del biogás como producto de mayor valor añadido

Tercero, desarrollar procesos químicos sostenibles dentro del área de la química verde que permita la definición y desarrollo de nuevos procesos que puedan ser así considerados.

El presente proyecto se enmarca dentro del Plan de Especialización iniciado por la Fundación LEIA durante los últimos años dentro del área de Medio Ambiente y complementa otras actividades realizadas en este campo.

PECTINAS:



 

CAPÍTULO 2

MARCO TEÓRICO





2.1. LOS ACTINOMYCETOS:


Los actinomycetos han despertado un gran interés para biotecnólogos, genetistas y ecologistas, por su habilidad para producir metabolitos secundarios.

Muchos actinomycetos pueden crecer en los medios comunes usados en los laboratorios tales como agar nutricio, agar tripticasa soya, agar sangre y también en agar infusión cerebro corazón.

Los actinomycetos crecerán en caldos, pero necesitan ser cultivadas bajo condiciones especiales. El crecimiento en un tubo con caldo sin movimiento se da en la superficie, dejando el resto del caldo intacto. Los cultivos líquidos requieren considerable agitación y aireación. La agitación puede estar entre 200 - 250 rpm. para dar la adecuada aireación y homogenización del medio. De necesitar mayor mezclado, se puede colocar baffles en la parte interior del recipiente. Conforme avanza el tiempo de cultivo , el microorganismo crecerá en forma de pellet (Cross, 1980).

Los actinomycetos son un grupo de bacterias filamentosas , GRAM (+) , las células que se van a formar son denominadas conidias, además las encontramos participando en la degradación de desechos orgánicos en los suelos como el compostaje.

Vistos al microscopio tiene la forma de un hongo pequeño de tamaño bacteriano; la pared celular está constituida por una serie de ácidos murámicos y diaminopiméricos, careciendo de pectidoglucanos, característica que ayuda a reconocer a las bacterias. La composición de la membrana ayudó a excluir a los actinomycetos de la denominación hongo, por encontrar esteroles en la membrana. En cuanto al citoplasma, se ha clasificado como microorganismo procariote debido a que no posee un núcleo y que su cromatina se encuentra libre en el citoplasma. Su información genética posee una inestabilidad muy alta. Los actinomycetos generan metabolitos secundarios al final de la fase logarítmica. En la naturaleza son los mayores productores de antibióticos, seguidos por los hongos. Tienen la capacidad de degradar pesticidas y derivados de petróleo. Se han encontrado actinomycetos termófilos que interviene en el proceso de compostaje, produciendo una serie de enzimas como las celulasas y amilasas. Los actinomycetos son considerados como los médicos del suelo.

En los actinomycetos podemos ver actualmente el gran potencial que tienen en el campo agrícola, biomédico, en la salud y en la biorremediación (Franco, 2001).



Ficha de Tesis



Tabla de contenido









PDF del capítulo



Pectinas



Análisis



Investigaciones



Biorreactores



Enzimas



Situación del mercado








 

2.2. PECTINAS



Las pectinas o sustancias pécticas son polisacáridos que se componen principalmente de ácidos poligalacturónicos coloides (poliurónidos derivados del ácido galacturónico CHO(CHOH)4COOH. Se hallan en los tejidos de las plantas. Las pectinas son útiles por su capacidad para formar geles o jaleas con compuestos polihidroxilados, como los azúcares o con cantidades diminutas de iones polivalentes. En el presente estudio. El vocablo "jalea" se usará para designar al muy conocido producto semisólido formado por pectina, azúcar y ácido en condiciones determinadas.

La sustancia que se había supuesto era la causa de que los jugos de fruta se convirtieran en jalea, fue aislada por Braconnot en 1824, quien la denominó pectina. Las extensas investigaciones realizadas en los cien años siguientes esclarecieron las propiedades de las sustancias pécticas, pero poco hicieron para aclarar su naturaleza química. Entre 1920 y 1940 quedó establecida la producción de pectinas en escala comercial en cierto número de naciones y aquéllas llegaron a formar parte importante en el comercio internacional (Kirk, 1961).

Esquema N°1

ESTRUCTURA DE LA MOLECULA DE PECTINA (Campos D.,2001)






2.3. ANÁLISIS FÍSICO-QUÍMICO DEL SUSTRATO (CÁSCARA DE NARANJA)





Cuadro N.º 1 

COMPOSICIÓN FÍSICO-QUÍMICA DE LA CÁSCARA DE NARANJA
(Demain A. y Solomon N.,1986)







2.4. INVESTIGACIONES REFERENTES A LA PRODUCCIÓN DE PECTINASAS



En la Fermentación en Sustrato Sólido (FSS), la concentración del sustrato es mayor que en la Fermentación en Cultivo Sumergido (FCS), debido a que contiene entre 1 a 10 % de agua.(Laukevics, 1988).

En otra investigación, (Solís-Pereira & col., 1996), demostraron que en una concentración de 5 g/L de glucosa en una FCS la producción de pectinasas por Aspergillus niger fue reprimida, igualmente como la producción de otras enzimas hidrolíticas, tales como poligalacturonasas, pectinesterasas y celulasas; pero en una FSS con concentración de glucosa de 5 g/L la síntesis de pectinasas no es afectada. 

En la FCS el medio es completamente simple, consistiendo en un producto de la agricultura no refinado, el cual contiene todos los nutrientes necesarios para el crecimiento microbiano. Los sustratos más empleados en FSS son productos agrícolas (soya, arroz, trigo, maíz, etc), o subproductos agro industriales (salvado de trigo, bagazo de caña, residuos de remolacha, bagazo de cítricos, bagazo de manzana, cáscaras de diversos vegetales, etc.). Éstos, generalmente, empleados en combinación y/o, complementados con fuentes de carbono y energía fácilmente metabolizables (almidón, maltodextrinas, melazas, etc.) y otros nutrientes (úrea, calcio, fosfatos, etc) (Agosin, 1995).

Estos sustratos son colocados en agua, aunque pueden requerir de algún pretratamiento. El pretratamiento de estos sustratos (térmico principalmente) tiene un doble propósito; esterilización del sustrato y cambios en las propiedades fisicoquímicas del sustrato (gelatinización del almidón, aumento de la porosidad, etc.), que influye favorablemente en la degradabilidad y accesibilidad de los componentes poliméricos (polisacáridos y proteínas) y estructurales del sustrato (Milstein y Flowers, 1986).

Una producción de pectinasa usando cáscara de limón con diferentes pretratamientos, fue realizada determinándose pectin esterasa y poligalacturonasa. Los resultados menos favorables fueron obtenidos usando cáscara de limón seca; usando cáscara de limón lavada y no lavada los resultados fueron similares para la poligalacturonasa, en tanto que el nivel de pectin esterasa fue particularmente alto con cáscara de limón no lavada. Los bajos niveles de actividad fueron obtenidos cuando las cáscaras se secaron a una temperatura final de 120 ºC, lo cual indica claramente la importancia de este tratamiento con las cáscaras, cuando es usado para la producción de pectinasas (Maldonado, 1986).

Por otro lado, se ha probado sulfato de amonio para suplir la fuente de nitrógeno, debido al menor costo que el fosfato de amonio. El ensayo dio lugar a una reducción del 20 % de actividad pectinasa (Saval y Huitron, 1983).

El pH óptimo de la enzima poligalacturonasa fue probada usando buffer acetato para pH 2.5 - 4.5 obteniéndose una actividad pectinolítica máxima a un pH de 3.5 (El Sayed, 1994).

Las bacterias anaeróbicas productoras de pectinasas presentan un buen crecimiento a pH 7,0 y una temperatura de 45 ºC. La máxima actividad poligalacturonasa fue de 4,7 U. I./mL hallada en un caldo de fermentación (Shivakuman, 1995).

En otra investigación (Abdel - Fattah y Ismail, 1996) trabajaron sobre el efecto de las reacciones al variar valores de pH y Temperatura de las preparaciones enzimáticas, hallando valores óptimos de 4.5 y 50 ºC, respectivamente.

La producción de pectinasa extracelular es inducida por sustancias pécticas o por desechos agroindustriales tales como pulpa de limón o naranja, los cuales tienen apreciables cantidades de pectina, (Aguilar y Huitron, 1986).

Pectina y glucosa fueron usadas como comparación de fuente de carbono, los resultados obtenidos con glucosa fueron pobres, considerando la naturaleza inducible de las enzimas pectinolíticas (Kilara, 1982).

(Sincere, 1989), seleccionaron tres cepas productoras de enzimas pécticas (Talaromyces flavus, Penicillium charlessi y Tubercularia vulgaris), utilizando pellets de pulpa de cítricos se obtuvieron actividades pectinolíticas más altas que las producidas por Aspergillus níger.
 
En otro estudio de producción de pectinasas bacterianas, utilizando pulpa de café como sustrato, se encontró 0,76 U (unidades de actividad enzimática) para pulpa de café húmedo (Cabello y col.,1982).

La presencia de pectina en la composición del medio de cultivo es un factor importante, ya que influye sobre la diversidad y cantidad de enzimas pécticas, sabiendo además que la producción de enzimas pectinasas es inducible y no constitutivo (Trejo y col., 1991).

Moreno y col.,(1995) reportan un estudio de producción de pectinasa a partir de fermentación en sustrato sólido utilizando cáscara de yuca y limón con Aspergillus niger ATCC 10864 obteniéndose una productividad volumétrica de 434,4 U. I./(L*h), mayor que otros autores, 39 U. I./(L*h) ( Abdel-Fattah y col., 1977)

Con respecto a las desventajas que pueden haber en una FSS tenemos que es un proceso más lento que una FCS, debido a la gruesa barrera de sólido; también presenta problemas de disipación de calor limitado por la transferencia de masa intrapartícula (Trejo y col.,1991).


2.5. BIORREACTORES



El cultivo de bacterias, levaduras y hongos en un cultivo sumergido es una práctica universal en la industria de fermentaciones, desde la década de los 40's. La aplicación de energía a los sistemas de fermentación hace que los procesos de transporte convectivos sean órdenes de magnitud más rápidos que los procesos difusionales que controlan el transporte en el cultivo sólido. Esto ha permitido el desarrollo de procesos de alta productividad que han hecho del cultivo sumergido la técnica de más uso en la industria de las fermentaciones. Aunque la agitación mecánica sigue siendo la forma más usada de aplicar energía.

Independientemente del tipo de cultivo, existen tres consideraciones, además de la homogenización y la transferencia de oxígeno, que son de importancia en el diseño de biorreactores: La primera tiene que ver con la esterilidad. Llevar a cabo un proceso en ausencia de contaminación es un requisito fundamental. El diseño de tomas de muestras y sellos mecánicos, el acabado de la superficie del tanque, así como de la conexión de válvulas y aditamentos, juega un rol importante en un diseño exitoso. Un segundo aspecto de importancia es la remoción de calor. En vista de que las temperaturas de fermentación son moderadas (25 a 40 ºC) y que el cultivo de células es un proceso exotérmico, el control de la temperatura en un biorreactor requiere de la remoción de cantidades importantes de calor. Un tercer punto de fundamental importancia son los aspectos mecánicos, la selección de reductores de velocidad y el diseño de la flecha de agitación (Miranda y col., 1996).


2.6. ENZIMAS PECTINASAS COMERCIALES



La moderna tecnología de los zumos de frutas exige una degradación rápida e intensa de la pectina, con el fin de que el prensado, la clarificación y la filtración puedan realizarse de una manera segura y económica.

PECTINEX es una preparación purificada, producida por una cepa de Aspergillus níger. El producto contiene principalmente pectin-transeliminasa, poligalacturonasa, pectinesterasa y hemicelulasas, siendo capaz de romper sustancias pécticas vegetales.

PECTINEX y ULTRAZYM son productos que han sido obtenidos como resultado de una investigación y un desarrollo de varios años. Por su amplio espectro de acción, satisfacen de manera ideal las diversas exigencias que se imponen a su sistema óptimo de enzima en cada una de las etapas individuales de producción. Por lo tanto, PECTINEX y ULTRAZYM permiten asegurar buenos resultados en todo el mundo, bajo las más diversas condiciones tecnológicas.
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