Examen físico




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EXAMEN FÍSICO


      1. Aspecto y color

      2. Olor

      3. Consistencia

      4. Coagulación

      5. pH

      6. Densidad


MATERIAL, EQUIPO E INSTRUMENTACIÓN

  • MATERIAL PARA TOMA DE MUESTRA




1

tubo de ensaye de 13 x 100 mm estéril con anticoagulante

1

tubo de ensaye de 13 x 100 mm estéril sin anticoagulante

1

tubo de ensaye de 13 x 100 mm estéril con solución salina isotónica

1

pipeta Pasteur con bulbo




hisopos estériles




torundas de algodón con alcohol



  • MATERIAL PARA LA PRUEBA




1

tubo de ensaye de 13 x 100 mm

1

pipeta Pasteur con bulbo

5

portaobjetos




gradilla,





aplicadores de madera




papel Parafilm



  • INSTRUMENTACIÓN

Refractómetro o densitómetro

A) COLOR Y ASPECTO.

El aspecto normal va de transparente a opaco y el color suele ser de verde a amarillo, a menos que contenga sangre será de tono rosado-rojizo.

Los trasudados en las ictericias se observan de color amarillo oscuro debido a la presencia de bilirrubina. Los líquidos pleurales son quilosos (lechosos), al igual que los peritoneales. Generalmente los trasudados recién extraídos son transparentes, al enfriarse se tornan lechosos.

  1. COAGULACIÓN

La coagulación en los trasudados suele ser negativa o ligeramente positiva, y es mas lenta que en los exudados. Excepto en caso de trasudados hemáticos y quiloides, especialmente cuando se debe a la presencia de tumores malignos.

De 1 – 2 ml de líquido recién extraído se colocan en un tubo de ensaye de 13 x 100 mm y se observa con que rapidez coagula.

D) DENSIDAD

Por lo general la densidad de los trasudados es inferior a la de los exudados, varia de 1.006 – 1.015, esta prueba ayuda a su diferenciación; sin embargo, los resultados están sujetos a considerables alteraciones, de acuerdo a la cantidad de proteína presente, lo cual depende de la permeabilidad de los capilares del cuerpo. Así, los trasudados pleurales y peritoneales contienen mayor cantidad de proteínas y por consiguiente son de mayor densidad. En los trasudados tumorales la densidad se eleva hasta 1.025. La técnica empleada es la misma utilizada para muestras de orina.

E) pH.

El pH de los trasudados es alcalino cerca de 7.4. y se determina con el potenciómetro o papel pH.

EXAMEN QUÍMICO DE TRASUDADOS


    1. Determinación cualitativa y cuantitativa de proteínas

    2. Determinación de glucosa

    3. Determinación de cloruros

    4. Otras determinaciones


A) DETERMINACIÓN DE PROTEINAS

Esta determinación es de gran valor para diferenciar los trasudados de los exudados. Se realiza con los mismos métodos que se usan para sangre y orina, efectuándose diluciones multiplicándose la cifra obtenida por el factor de dilución y los resultados se expresan en g/ l.

En los trasudados pleurales y peritoneales, en caso de insuficiencia cardiaca congestiva, cirrosis, nefrosis, pueden mostrar de 0.1 a 1 g/ 100 ml en la concentración de proteína. Si estos trasudados permanecen varios días en la cavidad, el líquido se reabsorbe mas por lo que la concentración de proteínas en estos casos esta elevada, llegándose a confundir algunas veces con los exudados, (que a diferencia de los trasudados son de origen inflamatorio).


B) DETERMINACIÓN DE CLORUROS

La determinación de cloruros se hace igual que en suero. El cloruro en los trasudados suele ser mayor que el cloruro plasmático, varia de 720 a 750 mg / 100 ml de NaCl. Esta diferencia se debe al equilibrio Donan el cual depende de la mayor concentración de proteínas en el plasma que en los trasudados.
C) OTRAS DETERMINACIONES

Se pueden hacer determinaciones de glucosa, creatinina, ácido úrico, urea, fósforo inorgánico, y enzimas teniendo concentraciones iguales que en el suero, las técnicas son las mismas que se emplean para las determinaciones séricas. Se recomienda también electroforesis de proteínas. El contenido de Ca se encuentra mas elevado en los trasudados y exudados que en el plasma debido a las proteínas presentes los valores de Na, Mg, K se encuentran disminuidas con respecto a los plasmáticos.

La presencia de bilirrubinas se ve en los trasudados pleurales y peritoneales sin que exista aumento en la sangre. Por lo general, no contienen lípidos pero el aspecto quiloso es debido a la presencia de pequeñas cantidades de lecitina y colesterol.

La determinación de mucoproteinas es importante por que se elevan en procesos neoplásicos o disminuyen en cirróticos, los valores de referencia se encuentran entre 60 y 100 mg / 100 ml.

La determinación de la deshidrogenasa láctica es útil en el diagnostico de tumores metastáticos, pleurales o ascíticos. Todas estas determinaciones son los mismos que se realizan en sangre.
EXAMEN MICROSCÓPICO DE TRASUDADOS

    1. OBSERVACIÓN DIRECTA (muestra en solución salina)

    2. PREPARACIONES TEÑIDAS (con tinciones hematológicas y bacteriológicas)


REACTIVOS.

1. COLORANTE PARA TINCION DE MAY – GRUENWALD GIEMSA

2. COLORANTE PARA TINCION DE WRIGHT

3. SOLUCIÓN BUFFER DE FOSFATOS PARA TINCIÓN DE WRIGHT

4. CITRATO DE SODIO

5. ACEITE DE INMERSIÓN EN FCO GOTERO

6. SOLUCION SALINA DE CLORURO DE SODIO 0.9%


MATERIAL, EQUIPO E INSTRUMENTACIÓN

  • MATERIAL PARA LA PRUEBA




1

tubo de ensaye de 13 x1200 mm con anticoagulante estéril

1

pipeta Pasteur con bulbo

5

portaobjetos

5

cubreobjetos




gradilla, perilla





puente de tinción




aplicadores de madera




papel Parafilm


  • INSTRUMENTACIÓN

Microscopio binocular con iluminación Koheler

TÉCNICA.

      1. OBSERVACION DIRECTA O EN FRESCO

Puede realizarse la observación directa “en fresco” a los trasudados aunque poseen escasas células, una segunda opción en concentrar por centrifugación las muestras líquidas con anticoagulante y del sedimento se hace una preparación entre portaobjetos y cubreobjetos para la observación microscópica, primero se observa con objetivo seco débil y luego con seco fuerte para búsqueda de células mesoteliales, linfocitos, células tumorales, leucocitos, eritrocitos, etc.


      1. OBSERVACION MICROSCÓPICA DE MUESTRAS TEÑIDAS


TINCIONES HEMATOLÓGICAS
La observación de muestras teñidas tiene dos propósitos fundamentales el primero: al utilizar colorantes para extendidos sanguíneos tratamos de distinguir procesos infecciosos agudos (donde existe predominio de células polimorfonucleares) de los procesos infecciosos crónicos (el predominio es de células mononucleares -tuberculosis, sífilis, tumores-), mientras que si se distinguen eosinófilos predominantemente sugiere procesos alérgicos o parasitarios. Y el segundo objetivo con las tinciones bacteriológicas, es informar de manera rápida la población bacteriana persistente para instituir el protocolo de tratamiento lo más pronto posible.
TÉCNICA

        1. Depositar una pequeña gota de material a estudiar sobre el portaobjeto limpio y seco.

        2. Hacer un extendido delgado tipo hematológico o bacteriológico.

        3. Dejar secar y teñir con la técnica de May – Gruenwald Giemsa para efectuar la diferenciación celular.

        4. Puede teñirse con Wright, Papanicolaou, etc.

Es conveniente agregar citrato sódico a la muestra biológica para evitar coagulación.


TINCIONES BACTERIOLOGICAS
Se usan las tinciones Gram y Ziehl – Neelsen para teñir los frotis.

REACTIVOS

  1. TINCION DE GRAM 2. TINCION DE ZIEHL NEELSEN (BAAR)

CRISTAL VIOLETA FUCSINA FENICADA

LUGOL ALCOHOL ACIDO

ALCOHOL ACETONA AZUL DE METILENO

SAFRANINA
MATERIAL, EQUIPO E INSTRUMENTACIÓN

  • MATERIAL PARA LA PRUEBA




1

tubo de ensaye de 13 x 100 mm estéril con anticoagulante

1

pipeta Pasteur con bulbo

5

portaobjetos

5

cubreobjetos




gradilla,





puente de tinción




aplicadores de madera




papel Parafilm










  • INSTRUMENTACIÓN

Microscopio binocular con iluminación Koheler

TECNICA

  1. Seguir los procedimientos habituales de cada tinción y observar con aceite de inmersión en el microscopio, las preparaciones.

  2. Al término de la observación asegúrese de dejar limpios los objetivos.



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